07 Dic
Práctica: Función de las Células Parietales del Estómago. Acidez Gástrica Total Estimulada y Débito Ácido/hora
El **Gastroenterólogo A. W. Kay** describió un método con el objeto de lograr una estimulación máxima de las **células parietales** del estómago.
Condición Basal
En el contexto de la fisiología gástrica, se considera **condición basal** aquella en la cual el paciente está en completo ayuno después de haber dormido unas 6 horas tranquilamente, sin estar expuesto a ningún estímulo visual, olfativo ni auditivo.
Procedimiento de Estimulación Máxima (Método Kay)
- Bajo control fluoroscópico, debe insertarse una sonda naso-gástrica de modo que la punta de la sonda se encuentre en la parte más baja del cuerpo del estómago.
- En seguida, el paciente se coloca en decúbito lateral izquierdo y escupe toda la saliva que tenga durante toda la prueba.
- En estas condiciones, la sonda se conecta a una bomba de succión continua eléctrica y el contenido del estómago es aspirado continuamente a una **presión negativa de 30 a 50 mmHg**.
- Se aspira primero todo el contenido gástrico de la noche anterior y se descarta.
- Se recolecta luego **Jugo Gástrico (J.G.)** durante los **primeros 30 minutos** y se mide el volumen; se conserva esta primera muestra para trabajarla, es la muestra llamada **BASAL**.
- El **flujo Gástrico** debe ser chequeado a menudo, lo mismo que la succión.
- Luego debe inyectarse un **antihistamínico como Clorotrimetón 20 mg Intramuscular** (para disminuir en lo posible los efectos colaterales de una fuerte dosis de Histamina que recibirá luego). Se usa como estimulante de la célula parietal.
- Se administra el estimulante: **Fosfato de Histamina** a una dosis de 0.04 mg x Kg. de peso, vía subcutánea, o mejor **Pentagastrina**: 6 microgramos x Kg. peso.
- Se continúa recolectando las muestras de jugo gástrico durante los lapsos de tiempo de 15 minutos cada uno, que son los siguientes: **0 a 15 min.; 15 a 30 min.; 30 a 45 min. y 45 a 60 min.**
- Se medirá la acidez de titulación en cada una de las muestras empleando **NaOH 0.1 Normal**, hasta la neutralización, utilizando como indicador **Fenolftaleína solución alcohólica al 1%**.
Valores Referenciales
- Residuo Gástrico Después de 12 hs de ayuno: 20 a 100 ml (generalmente menos de 50 ml)
- pH: 1.5 a 3.5
- Acidez sin Estímulo: 1 a 4 mEq H+ / litro
- Acidez post estímulo (Kay) o Pentagastrina: 10 a 120 mEqH+ / litro
Débito Ácido Basal/hora (Normal)
- Hombres: 1 a 10.5 mEq/hora
- Mujeres: 1 a 5.6 mEq/hora
Débito Ácido Máximo/hora (Normal)
- Hombres: 12 a 60 mEq/hora
- Mujeres: 8 a 40 mEq/hora
Práctica: Motilidad Intestinal
1. Introducción
El esófago, el estómago y los intestinos tienen inervación **parasimpática predominante**. La **acetilcolina** es el neurotransmisor de este sistema y actúa como un **agonista de la motilidad intestinal**.
2. Material
- Equipo para órganos aislados
- Conejo
- Algodón embebido en aceite
- Quimógrafo
- Acetilcolina
- Equipo de disección
- Pilocarpina
- Solución de Ringer para mamíferos
- Adrenalina
- Suero fisiológico
- Atropina
- Bañomaría a 40 °C
- Termostato
- Balón de oxígeno
3. Método
3.1. Experimento No. 1 (Registro Basal)
Se sacrifica al animal y se realiza una laparotomía para resecar un segmento de intestino delgado de unos 20 centímetros. Se marca el extremo proximal. Se lava la pieza operatoria con suero fisiológico, se le sumerge en un baño de solución de Ringer a 40 °C y se fija a la palanca inscriptora del quimógrafo. Se mantiene oxigenado el medio por burbujeo constante. Se realiza el registro de la **actividad intestinal basal**.
3.2. Experimento No. 2
Se añaden unas gotas de **acetilcolina** en el baño maría y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.3. Experimento No. 3
Se añaden unas gotas de **pilocarpina** en el baño maría y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.4. Experimento No. 4
Se añaden unas gotas de **adrenalina** en el baño maría y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.5. Experimento No. 5
Se añade unas gotas de **pilocarpina** en el baño maría y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.6. Experimento No. 6
Se añaden unas gotas de **atropina** en el baño maría y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.7. Experimento No. 7
Se suspende la oxigenación y se obtiene un nuevo registro en el quimógrafo.
3.8. Experimento No. 8
Se introduce un pedazo de algodón embebido en aceite en el extremo proximal intestinal y se observa su progresión.
Motilidad Gastro-Intestinal
Objetivo
El objeto de esta práctica es estudiar los **movimientos peristálticos rítmicos** del aparato gastrointestinal y el control que el **Sistema Nervioso Autónomo** (tanto Simpático como Parasimpático) ejerce sobre la motilidad gástrica e intestinal. Además, demostraremos la influencia de los neurotransmisores **acetilcolina** y **adrenalina** sobre las funciones de contracción y relajación de la musculatura lisa gastrointestinal.
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